(50).动物细胞培养的原理是细胞增殖，没有体现细胞的全能性。
(51).从动物体中取出的组织可用机械的方法或胰蛋白酶、胶原蛋白酶处理使其分散，然后制成细胞悬液。
(52).动物细胞培养生产病毒疫苗、干扰素、单克隆抗体，用于检测有毒物质、筛选抗癌药物等。
(53).体外培养的动物细胞往往分为两类：
<1>.悬浮细胞：能悬浮在培养液中生长增殖的细胞。
<2>.贴壁细胞：需要贴附于某些基质表面才能生长增殖的细胞。（大部分细胞）
(54).细胞贴壁：贴壁细胞贴附在培养瓶的瓶壁上的现象。
(55).悬浮培养的细胞会因细胞密度过大、有害代谢物积累和培养液中营养物质缺乏等因素而分裂受阻。
(56).贴壁细胞出上述因素外还会发生接触抑制现象。
(57).接触抑制：当贴壁细胞分裂生长到表面相互接触时停止分裂增殖的现象。
(58).原代培养：动物组织经处理后的初次培养。（分瓶之前）
(59).传代培养：分瓶后的细胞培养。
(60).进行传代培养时，悬浮培养的细胞直接用离心法收集，贴壁细胞需要重新用胰蛋白酶处理再用离心法收集。
(61).传代培养10～50代细胞（细胞株）中部分细胞的细胞核型可能会发生变化，朝等同于癌细胞的方向发展。
(62).细胞株：传代培养50代以后获得不死性的细胞，具有癌变特点。
(63).为保持细胞正常的二倍体核型，使用或冷冻的正常细胞通常为10代以内的细胞。
(64).动物细胞培养所需的条件有：
<1>.动物细胞所需的所有营养。（由于细胞所需营养物质尚未完全研究清楚，常再培养液中加入一些天然成分）
<2>.无菌、无毒的环境。
<3>.适宜的温度、pH和渗透压。（35.5℃～36.5℃为宜，pH为7.2～7.4）
<4>.合适的气体环境。（95%的空气和5%的CO2混合，放入CO2培养箱）
(65).合成培养基：将细胞所需的营养物质按种类和所需量严格配置而成的培养基。
(66).动物细胞培养常用液体合成培养基（又称培养液），其中天然成分一般是动物血清，有机物包括糖类、氨基酸和维生素。
(67).为保证细胞所处环境无菌、无毒，应：
<1>.对营养液和所有培养用具进行灭菌处理。
<2>.在无菌环境下进行操作。
<3>.定期更换培养液。（防止细胞代谢物积累对细胞自身造成危害）
<4>.在培养液中添加适量抗生素。（防止杂菌污染）
(68).培养液中的调节物质是促生长因子。
(69).分散成单个细胞培养更能满足细胞对营养物质和氧气的需求。
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